domingo, 19 de febrero de 2012

práctica 1: puncion capilar

Práctica: 1
“PUNCIÓN CAPILAR”
Objetivo:
Realizar y a prender como obtener sangre por medio de una punción capilar o cutánea, esta con el objetivo de hacer una tinción para observar mejor las características de las células sanguíneas

Fundamento:
Es la recolección de una muestra de sangre que se obtiene punzando la piel. Los capilares son diminutos vasos sanguíneos que se encuentran cerca de la superficie de la piel.
La sangre capilar en la piel refleja a gran medida la sangre arterial, la punción en el talón es la técnica mas aplicada en los neonatos o recién nacidos o bien que ya tienen 27 días de nacidos o menos, y es a menudo utilizada cuando se requieren pequeñas cantidades de sangre para análisis de laboratorio con un objetivo diagnóstico.
Los vasos sanguíneos o también conocidos como capilares sanguíneos de menor tamaño solo están formados por una capa de tejido, esto permite un intercambio entre sustancias de la sangre.
El estudio de la sangre requiere su extracción del organismo para ser estudiada esta necesita su extracción por punción venosa o capilar, los análisis dependen de gran medida de la obtención por eso esta punción debe realizarse bien si no dará resultados falsos.

Material y sustancias:
  • Algodón.
  • Alcohol al 70%.
  • Lancetas desechables y estériles
  • Tubos capilares
  • Portaobjetos
  • Cuba de tinción
  • Pipetas Pasteur
  • Pizeta
  • Colorante de Wright
  • Buffer de fosfato
  • agua
Técnica:
1.-La sangre capilar se obtiene de la cara lateral del dedo medio o anular en los adultos, del lóbulo de la oreja y del dedo gordo del pie o talón en los niños.
2.-Desinfectar la zona con alcohol al 70%, secar con algodón estéril.
3.-Punzar la piel con una lanceta estéril desechable (2 mm de profundidad).
4.-Usar gasa estéril para desechar la primera gota y recoger las siguientes en tubos capilares.
5.-Despues de que se obtiene la muestra con los tubos estos se sellan al calor (fuego) colocando el tubo en la parte que no tuvo contacto con el dedo anular o bien con la sangre.
6.-Estos tubos se colocan en la micro centrifuga y centrifugar durante 5 minutos.
7.-Se colocan 2 o 3 gotas de sangre en el portaobjetos, teniendo la gota esta se extiende en el portaobjetos para ser teñida con la tinción de Wright.
8.- se observaron las características o resultados en el microscopio y se hacen anotaciones.
Observaciones:
Vista 10X: aquí podemos observar todos los eritrocitos o glóbulos rojos en donde se puede caracterizar que se encuentran demasiados.
Vista 40X: n esta imagen podemos apreciar mejor los eritrocitos pero si lo vemos más detalladamente se distinguen unas pequeñas células teñidas de color violeta las células llamadas perfectas los leucocitos se alcanza a ver uno muy levemente a las 3.
Vista 100X: en la parte del centro superior se puede observar un neutrófilo y alguna que otra plaqueta y una pequeña esfera de color violeta mostrada a las 7 se puede observar un linfocito.
Resultados:
En el lector de hematocrito nos salió bien ya que salió con un valor de 46%.
Nota:
Valores altos:
Se pueden asociar a deshidratación o hipoxia (enfermedad del cuerpo en donde este se ve privado al suministro de oxígeno). Y patologías policitemia vera (desmedida producción de G.R.).
Valores bajos:
Anemia, se puede relacionar a varios factores como leucemia o hemorragia.
Los resultados llevados mediante la tinción:
En estos mediante la tinción de Wright se pudo observar mejor la morfología de los eritrocitos estos caracterizados por que existen muchos y aparte por su forma bicóncava que se aprecia en mucha de las imágenes mostradas anteriormente.
Expresando de igual forma que se encontró un neutrófilo y un linfocito estos caracterizados por su morfología pero se encontraron pocas plaquetas.
Conclusiones:
Tomando en cuenta mi punto personal la práctica que se llevó a cabo el día 17 de febrero del año 2012, llegue a la conclusión de que nos sirvió primero para conocer la morfología bien de las células sanguíneas al igual nos llevó a conocer claramente como se hace la punción capilar y para que situaciones se utiliza. Al igual que nunca se deben comparar los resultados de esta con los de una venopuncion.
Cuando la cantidad de sangre que se precisa es muy pequeña o cuando por diferentes motivos no pueda practicarse una punción venosa, debe recurrirse a la punción capilar, como por ejemplo en los recién nacidos, lactantes, niños donde no se observan adecuadamente las venas, en personas con quemaduras extensas o bien en pacientes que han recibido quimioterapia por cáncer y tienen sus venas fibrosas (duras).Esta punción permite la obtención de una cantidad muy pequeña de sangre

Ventajas
  • Puede obtenerse con facilidad.
  • Es preferible cuando han de realizarse extensiones de sangre periférica.
  • En el cuerpo existen diversos sitios de recolección (el talón , la punta de los dedos) que se pueden rotar.
  • Esta muestra se puede extraer en la casa y con un entrenamiento mínimo. Los diabéticos, por ejemplo, deben chequear sus niveles de ázucar en la sangre varias veces al día utilizando una muestra sanguínea capilar

  • Desventajas
  • Sólo se pueden obtener pequeñas cantidades de sangre y los exámenes de repetición requieren nuevas muestras.
  • La sangre en microtubos (capilares) frecuentemente se hemoliza interfiendo con la mayoría de pruebas de laboratorio.
  • Los resultados obtenidos en pruebas con sangre capilar no pueden ser comparados con los resultados de las pruebas con sangre venosa.
  • El dedo no sólo es delicado sino difícil de desinfectar adecuadamente en el tiempo disponible.
  • En pacientes con resistencia disminuida a la infección (aquellos con leucemia, agranulocitosis, diabetes, uremia y enfermedades con deficiencias inmunológicas), una muestra tomada del dedo es mucho más probable que conduzca a una infección que otra tomada del brazo.
  • El recuento de eritrocitos y leucocitos, así como el recuento de plaquetas y Reticulocitos, no debe realizarse en sangre capilar debido a la difícil estandarización del flujo sanguíneo capilar.
Referencias:
  • http://es.wikipedia.org/wiki/Hematocrito consultada el día 17 de febrero del 2012.
  • Consultada el dia 16 de febrero del 2012 http://www.umm.edu/esp_ency/article/003427.htm
  • Consultado el día 17 de febrero del 2012 Manual de técnicas de laboratorio en hematología, autor: Joan Lluís Vives. Páginas: 10-13 tema: la sangre, características generales.
  • Consultado el 17 de febrero del 2012 Manual de procedimientos en neonatología, autor: José María Ceriani Cernadas páginas: 87-91 
  • Tema: muestra de sangre capilar.

lunes, 21 de noviembre de 2011

Técnicas macroscópicas coproparasitoscopicas




TECNICAS MACROSCOPICAS COPROPARASITOSCOPICAS TAMIZADO
Objetivo:
Buscar macroscópicamente y microscópicamente huevos o escólex de una tenia para así después de realizar la técnica encontremos proglotidos macroscópicamente y podamos observarlos microscópicamente para saber a qué tenia pertenecen estos de tal manera que se pueda dar un resultado correcto y se pueda dar tratamiento.
   
Introducción:
La técnica de tamizado Permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados. tal es el caso de los helmintos: T. solium y T. saginata Es un parásito importante del hombre en aquellos lugares donde el consumo frecuente de la carne de cerdo y de res cruda o insuficientemente cocida, ya que la carne de estos animales puede contener las fases larvarias de las tenias mencionadas, las cuales se denominan metacéstodos o cisticercos.

Fases de desarrollo:
Adulto
(T. solium.) Mide de 2 a 7 metros de longitud y posee escólex o cabeza cuadrangular de aproximadamente 1 mm de diámetro, con cuatro ventosas musculares grandes en forma de copa que miden 0.5 mm de diámetro y róstelo prominente, redondeado y armado con una doble corona de ganchos en número de 22 a 32. Luego sigue el cuello y la cadena estrobilar compuesta por unos 1,000 a 2,000 segmentos o proglótidos.
Metacestodo, cisticerco
Existen dos tipos fundamentales el de T. solium, también denominado Cysticercus cellulosae, el cual es una vesícula
blanquecina de 0.5 a 1.5 cm de ancho, con escólex invaginado y armado con
doble corona de ganchos, al igual que el adulto, y el de T. saginata, denominado Cysticercus bovis, más o menos con las mismas características que el anterior,
pero sin corona de ganchos en el escólex.
Huevos
Los huevos que producen los adultos de ambas especies de Taenia son semejantes e indistinguibles al examen microscópico. Son esféricos, miden de 30 a 45 micras de diámetro y poseen una cápsula gruesa radiada y una membrana hialina de origen embrionario. En su interior, se encuentra el embrión (oncosfera o embrión hexacanto) que generalmente posee tres pares de ganchos.


Mediante el tamizado de las heces también es posible recuperar el escólex, sobre todo después de los tratamientos, el cual se observará bajo el microscopio para determinar sus características morfológicas.
La técnica nos favorece el estudio morfológico de estas tenias como se ha visto anteriormente en las clases ya sabemos como son morfológicamente estas tenias esta técnica generalmente se basa en la búsqueda de tenias. La técnica de tamizado nos permite encontrar macroscópicamente algunos proglotidos qu estos pueden ser estudiados mejor microscópicamente.


Fundamento: se fundamenta en el fenómeno de la filtración, utilizando tamices de diferentes diámetros en donde quedan atrapados los parásitos (trematodos, cestodos, nematodos). Esta técnica permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados de los metazoario.
La técnica aparte de filtración que esta nos permite que las heces queden lo más limpias posibles para así poderlas ver mejor macroscópicamente.


Material:
  • Coladera de tamiz fino

  • Abatelenguas
  • Caja Petri
  • Agitador
  • Portaobjetos
  • Cubreobjetos
  • Microscopio


Reactivos:
  • Solución salina
Reactivos biológicos:
  • Heces


Procedimiento:
  1. Colocar pequeñas porciones de materia fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.

  1. dispersar la muestra con el abatelenguas y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posible.

  2. Revisar cuidadosamente las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.



  3. Los parásitos encontrados colocarlos en una caja Petri con solución salina.

  4. Se identifica la parte del parásito o el parasito completo.
  5. Se reporta el género y la especie del parásito o parte del parasito.


  6. Se coloca este residuo sospechoso en un portaobjetos con una pequeña gota de solución salina y se observa al microscopio.


















Resultados:
Macroscópicos:




Se podían observar residuos de comida como semillas de chile, restos de jitomate, restos de cascara de tomate y se observaban estos señalados con una flecha amarilla se puede observar una fina y delgada line de color blanco, este es nuestro residuo sospechoso así que lo colocamos en un portaobjetos y lo observamos microscópicamente para verlo mejor.




Microscópicos:
Vista 40X:
En esta vista podemos observar un pedazo de proglotido pero no podemos confirmar bien de que tenia es, ya que no vimos el escólex. En esta se puede observar más o menos su estructura de estos.
Vista 40X:
Aquí lo único que observamos fueron cristales.




Conclusión: la técnica de tamizado está basada real mente en encontrar estos parásitos macroscópicamente ya que se pueden enconcontrar por medio de la filtración estos se pueden observar macroscópicamente ya que algunos si se pueden ver y existen algunos que con ayuda del microscopio podemos observarlos para así poder observarlo mejor su morfología de este.
Mediante el tamizado es posible encontrar o recuperar el escólex el cual se observa microscópicamente para saber sus características morfológicas.
Ocasionalmente se pueden encontrar huevos de Taenia sp. por los exámenes coproparasitoscópicos de flotación como el Faust, Ferreira, etc, o de sedimentación, como el Ritchie, o a buscar huevos de Enterobius vermicularis mediante el método de Graham. Es importante decir, que el hallazgo de los huevos de Taenia sp. Por cualquiera de los métodos empleados de ninguna manera permiten realizar el diagnóstico de una especie de tenia, y sólo se informan como "huevos de Taenia sp."

Comentario:
En lo personal esta técnica me pareció fácil y sencilla solo que un poco insegura ya que a la hora de filtrar debemos tener mucho cuidado ya que existen proglotidos muy pequeños y se nos pueden escapar pero en partes me pareció un poco sencilla ya que en nuestro equipo si encontramos macroscópicamente como 7 estos se alcanzaban apreciar como pequeños bastoncillos de color blanco y delgados también observamos muchos restos de comida ya mencionados anterior mente en las fuentes de información que consulte por lo que pude comprender generalmente esta técnica se basa en encontrar nematodos y algunos huevos de taenia.
Fuentes de información:
  • http://www.scrib-
    MANUAL-DE-LABORATORIO-DE-PARASITOLOGIA.com
  • http://tecnica de tamizado« Parasitología General.mht
  • Diagnóstico parasitológico – koneman/allen/Dowell/Janda/Sommers/Winn.
  • Métodos de laboratorio M.J.lynch. generalidades de los nematodos